Вышедшие номера
Home » Оптика и спектроскопия » Год 2024, выпуск 1 » Статья стр. 88
<<<>>>
Дифференциация новообразований кожи методом спектроскопии комбинационного рассеяния с длиной волны возбуждения 532 nm в диапазоне высоких волновых чисел
Российский научный фонд, Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований малыми отдельными научными группами, 23-25-00249
Шелыгина С.Н. 1, Римская Е.Н.1, Тимурзиева А.Б. 1,2, Сараева И.Н. 1, Кудрин К.Г. 1,3, Рупасов А.Е. 1, Настулявичус А.А. 1
1Физический институт им. П.Н. Лебедева Российской академии наук, Москва, Россия
2ФГБНУ "Национальный НИИ общественного здоровья им. Н.А. Семашко", Москва, Россия
3Кафедра онкологии, лучевой терапии и реконструктивной хирургии Первого МГМУ им. И.М. Сеченова, Москва, Россия
Email: shelyginasn@lebedev.ru, romehelen@gmail.com, alinko9977z@mail.ru, saraevain@lebedev.ru, kudrin_k@rambler.ru, rupasovan@lebedev.ru, ganuary_moon@mail.ru
Поступила в редакцию: 11 декабря 2023 г.
В окончательной редакции: 9 января 2024 г.
Принята к печати: 16 января 2024 г.
Выставление онлайн: 2 апреля 2024 г.
PDF версия
Конфокальная сканирующая микроспектроскопия комбинационного рассеяния света и флуоресценции является структурно чувствительным оптическим методом, позволяющим проводить неинвазивный анализ биомаркеров в тканях кожи. Отчетливые спектральные различия были замечены в спектрах комбинационного рассеяния света базальноклеточной карциномы и плоскоклеточной карциномы по сравнению со здоровой кожей и папилломой. Наш анализ спектров комбинационного рассеяния света и флуоресценции при длине волны возбуждения 532 nm позволил предложить два спектральных критерия: отношения интенсивностей для полос 2880 и 1445 cm-1 и полос 2930 и 1445 cm-1. Это основано на различиях колебаний липидов клеточных мембран, используемых в качестве биомаркеров. Эти критерии позволили дифференцировать здоровую кожу от базальноклеточной карциномы, плоскоклеточной карциномы и папилломы с чувствительностью и специфичностью более 90%, продемонстрировав высокую клиническую значимость в дифференциальной диагностике новообразований кожи. Ключевые слова: микроспектроскопия комбинационного рассеяния света и флуоресценции, рак кожи, неинвазивная диагностика, спектральный анализ.
  1. T. Diepgen, V. Mahler. Br.J. Dermatol., 146 (61), 1-6 (2002). DOI: 10.1046/j.1365-2133.146.s61.2.x
  2. V. Madan, J.T. Lear, R.M. Szeimies. Lancet, 375 (9715), 673-85 (2010). DOI: 10.1016/S0140-6736(09)61196-X
  3. O. Jones, C. Ranmuthu, P.N. Hall, G. Funston, F.M. Walter. Adv Ther., 37 (1), 603-616 (2020). DOI: 10.1007/s12325-019-01130-1
  4. Handbook of Optical Biomedical Diagnostics, ed. by V.V. Tuchin, 2nd ed. (SPIE Press, Bellingham, WA, USA, 2016)
  5. P. Gerami, J.P. Alsobrook, T.J. Palmer, H.S. Robin. J. Am. Acad. Dermatol., 71 (2), 237-44 (2014). DOI: 10.1016/j.jaad.2014.04.042
  6. L.K. Ferris, B. Jansen, J. Ho, K.J. Busam, K. Gross, D.D. Hansen, J.P. Alsobrook 2nd, Z. Yao, G.L. Peck, P. Gerami. JAMA Dermatol., 153 (7), 675-80 (2017). DOI: 10.1001/jamadermatol.2017.0473
  7. C.J. Cockerell, J. Tschen, S.D. Billings, C. Rock, B. Evans, L. Clarke. J. Am. Acad. Dermatol., 72 (5), AB3-AB3 (2015). DOI: 10.1016/j.jaad.2015.02.020
  8. H. Skvara, L. Teban, M. Fiebiger, M. Binder, H. Kittler. Arch. Dermatol., 141 (2), 155-160 (2005)
  9. H.D. Heibel, L. Hooey, C.J. Cockerell. Am. J. Clin. Dermatol., 21 (4), 513-524 (2020). DOI: 10.1007/s40257-020-00517-z
  10. Handbook of Non-Invasive Methods and the Skin, 2nd ed., ed. by J. Serup, G.B.E. Jemec, G.L. Grove (CRC Press, Boca Raton, FL, USA, 2006)
  11. Н.Н. Потекаев, Е.К. Шугинина, Т.С. Кузьмина, Л.С. Арутюнян. Дерматоскопия в клинической практике. Руководство для врачей (МДВ, М., 2011)
  12. A. Haroon, S. Shaf, B.K. Rao. Dermatol. Clin., 35 (4), 457-64 (2017). DOI: 10.1016/j.det.2017.06.007
  13. G. Monheit, A.B. Cognetta, L. Ferris, H. Rabinovitz, K. Gross, M. Martini, J.M Grichnik, M. Mihm, V.G. Prieto, P. Googe, R. King, A. Toledano, N. Kabelev, M. Wojton, D. Gutkowicz-Krusin. Arch. Dermatol., 147 (2), 188-94 (2011). DOI: 10.1001/archdermatol.2010.302
  14. L. Matveev, V. Zaitsev, G. Gelikonov, A. Matveyev, A. Moiseev, S. Ksenofontov, V. Gelikonov, M. Sirotkina, N. Gladkova, V. Demidov, A. Vitkin. Optics Lett., 40 (7), 1472-1475 (2015). DOI: 10.1364/OL.40.001472
  15. S.A. Alawi, M. Kuck, C. Wahrlich, S. Batz, G. Mckenzie, J.W. Fluhr, J. Lademann, M. Ulrich. Exp. Dermatol., 22 (8), 547-51 (2013). DOI: 10.1111/exd.12196
  16. L. Themstrup, C.A. Banzhaf, M. Mogensen, G.B.E. Jemec. Photodiagn Photodyn Ther., 11 (1), 7-12 (2014). DOI: 10.1016/j.pdpdt.2013.11.003
  17. Multimodal optical diagnostics of cancer, ed. by V.V. Tuchin, J. Popp, V.P. Zakharov (Springer Nature Switzerland AG, Basel, 2020)
  18. Y. Surkov, I. Serebryakova, Y. Kuzinova, O. Konopatskova, D. Safronov, S. Kapralov, E. Genina, V. Tuchin. Diagnostics, 14 (2), 202 (2024). DOI: 10.3390/diagnostics14020202
  19. C. Kendall, J. Hutchings, H. Barr, N. Shepherd, N. Stone. Faraday Discuss, 149 (1), 279-90 (2011). DOI: 10.1039/c005379a
  20. Z. Huang, S.K. Teh, W. Zheng, K. Lin, K. Y. Ho, M. Teh, K.G. Yeoh. Biosens Bioelectron, 26 (2), 383-9 (2010). DOI: 10.1016/j.bios.2010.07.125
  21. N.D. Magee, J.R. Beattie, C. Carland, R. Davis, K. McManus, I. Bradbury, D.A. Fennell, P.W. Hamilton, M. Ennis, J.J. McGarvey, J.S. Elborn. J. Biomed. Opt., 15 (2), 026015 (2010). DOI: 10.1117/1.3323088
  22. J.F. Brennan, T.J. Romer, R.S. Lees, A.M. Tercyak, J.R. Kramer Jr., M.S. Feld. Circulation, 96 (1), 99-105 (1997). DOI: 10.1161/01.cir.96.1.99
  23. J. Zhang, Y. Fan, Y. Song, J. Xu. Medicine, 97 (34), e12022 (2018). DOI: 10.1097/MD.0000000000012022
  24. B. Yakimov, E. Shirshin, J. Schleusener, A. Allenova, V. Fadeev, M. Darvin. Sci. Rep., 10 (1), 14374 (2020). DOI: 10.1038/s41598-020-71220-6
  25. A. Sdobnov, M. Darvin, J. Schleusener, J. Lademann, V. Tuchin. J. Biophotonics, 12 (5), e201800283 (2018). DOI: 10.1002/jbio.201800283
  26. A. Cios, M. Ciepielak, . Szymanski, A. Lewicka, S. Cierniak, W. Stankiewicz, M. Mendrycka, S. Lewicki. Int. J. Mol. Sci., 22 (5), 2437 (2021). DOI: 10.3390/ijms22052437
  27. I. Bratchenko, L. Bratchenko, A. Moryatov, Y. Khristoforova, D. Artemyev, O. Myakinin, A. Orlov, S. Kozlov, V. Zakharov. Experimental Dermatology, 30 (5), 652-663 (2021). DOI: 10.1111/exd.14301
  28. Z. Wu, B. Deng, Y. Zhou, H. Xie, Y. Zhang, L. Lin, J. Ye. Advanced Science, 10 (24), 2301721 (2023). DOI: 10.1002/advs.202301721
  29. E. Rimskaya, S. Shelygina, A. Timurzieva, I. Saraeva, E. Perevedentseva, N. Melnik, K. Kudrin, D. Reshetov, S. Kudryashov. Int. J. Mol. Sci., 24 (19), 14748 (2023). DOI: 10.3390/ijms241914748
  30. Z. Movasaghi, S. Rehman, I.U. Rehman. Appl. Spectroscopy Rev., 42 (5), 493-541 (2007). DOI: 10.1080/05704920701551530
  31. C. Choe, J. Lademann, M.E. Darvin. Analyst, 141 (22), 6329-6337 (2016). DOI: 10.1039/C6AN01717G
  32. F. Leon-Bejarano, M.O. Mendez, M.G. Rami rez-Eli as, A. Alba. Appl. Spectrosc., 73 (12), 1436-1450 (2019). DOI: 10.1177/0003702819860121
  33. N.J. Kline, P.J. Treado. J. Raman Spectroscopy, 28 (2-3), 119-124 (1997). DOI: 10.1002/(SICI)1097-4555 (199702)28:2/3<119::AID-JRS73>3.0.CO;2-3
  34. C. Camerlingo, I. Delfino, G. Perna, V. Capozzi, M. Lepore. Sensors, 11 (9), 8309-8322 (2011). DOI: 10.3390/s110908309

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.

Учредители

Издатель

© 2024 Физико-технический институт им. А.Ф. Иоффе Российской академии наук
Powered by webapplicationthemes.com - High quality HTML Theme