Корреляционная экстремальная ультрафиолетовая, ультрафиолетовая и оптическая микроскопия на базе зеркального микроскопа с аксиальной томографией
Российский научный фонд, 22-62-00068
Малышев И.В.1, Реунов Д.Г.1, Чхало Н.И.1, Торопов М.Н.1, Пестов А.Е.1, Полковников В.Н.1, Чернышев А.К.1, Плешков Р.С.1, Казаков Е.П.2,3, Лаврушкина С.В.2, Голышев С.А.2, Поспелов А.Д.4, Широкова О.М.
1Институт физики микроструктур Российской академии наук, Нижний Новгород, Россия
2Научно-исследовательский институт Физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
3Биологический факультет Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
4Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского, Нижний Новгород, Россия
Email: reunov_dima@ipmras.ru
Поступила в редакцию: 6 мая 2024 г.
В окончательной редакции: 6 мая 2024 г.
Принята к печати: 6 мая 2024 г.
Выставление онлайн: 27 июля 2024 г.
Рассмотрено применение зеркального экстремального ультрафиолетового микроскопа с 46-кратным разрешением до 140 nm для исследования образцов на трех длинах волн: 13.84, 200 и 535 nm. Возможность видеть одну область образца на разных длинах волн дает дополнительную информацию о его структуре. Выбор длины волны происходит за счет смены источников: светодиод или газовый лазерно-плазменный источник, а также ввода-вывода многослойного фильтра, отсекающего все, кроме 13.84 nm. Для трехмерной реконструкции проведено сканирование образца вдоль оптической оси на пьезоактуаторе. При реконструкции изображений по томографическим данным использована функция рассеяния точки, смоделированной на основе измеренных на интерферометре аберраций. Ключевые слова: экстремальная ультрафиолетовая микроскопия, ультрафиолетовая микроскопия, аксиальная томография, электронная микроскопия, мягкая рентгеновская микроскопия.
- E. Hanssen, Ch. Knoechel, M. Dearnley, M.W.A. Dixon, M. Le Gros, C. Larabell, L. Tilley. J. Struct. Biol., 177, 224 (2012). DOI: 10.1016/j.jsb.2011.09.003
- D. Sage, L. Donati, F. Soulez, D. Fortun, G. Schmit, A. Seitz, R. Guiet, C. Vonesch, M. Unser. Methods, 115, 28 (2017). DOI: 10.1016/j.ymeth.2016.12.015
- L. Schermelleh, R. Heintzmann, H. Leonhardt. J. Cell Biol., 190 (2), 165 (2020). DOI: 10.1083/jcb.201002018
- V. Luvcic, A. Rigort, W. Baumeister. J. Cell Biol., 202 (3), 407 (2013). DOI: 10.1083/jcb.201304193
- K. Leigh, P. Navarro, S. Scaramuzza, W. Chen, Y. Zhang, D. Casta\`no-Di ez, M. Kudryashev. Methods Cell Biol., 152, 217 (2019)
- M. Kordel, A. Dehlinger, C. Seim, U. Vogt, E. Fogelqvist, J.A. Sellberg, H. Stiel, H.M. Hertz. Optica, 7 (6), 658 (2020). DOI: 10.1364/OPTICA.393014
- B. Rosner, F. Koch, F. Doring, V.A. Guzenko, M. Meyer, J.L. Ornelas, A. Spath, R.H. Fink, S. Stanescu, S. Swaraj, R. Belkhou, B. Watts, J. Raabe, C. David. Microsc. Microanal., 24, 272 (2018)
- I. Kounatidis, M.L. Stanifer, M.A. Phillips, P. Paul-Gilloteaux, X. Heiligenstein, H. Wang, Ch.A. Okolo, Th.M. Fish, M.C. Spink, D.I. Stuart, I. Davis, S. Boulant, J.M. Grimes, I.M. Dobbie, M. Harkiolaki. Cell., 182 (2), 515 (2020). DOI: 10.1016/j.cell.2020.05.051I
- A. Gianoncelli, V. Bonanni, G. Gariani, F. Guzzi, L. Pascolo, R. Borghes, F. Bille, G. Kourousias. Appl. Sci., 11 (16), 7216 (2021). DOI: 10.3390/app11167216
- T. Parkman, M. Nevrkla, A. Janvcarek, J. Turvnova, D. Panek, M. Vrbova. Appl. Sci., 10 (18), 6373 (2020). DOI: 10.3390/app10186373
- И.А. Артюков, А.В. Виноградов, Е.А. Бугаев, А.Ю. Девизенко, В.В. Кондратенко, Ю.С. Касьянов. ЖЭТФ, 136 (5), 1009 (2009)
- M. Toyoda, K. Yamasoe, T. Hatano, M. Yanagihara, A. Tokimasa, T. Harada, T. Watanabe, H. Kinoshita. Appl. Phys. Express., 5 (11), 112501 (2012). DOI: 10.1143/APEX.5.112501
- L. Juschkin, R. Freiberger, K. Bergmann. J. Phys.: Conf. Ser., 186, 012030 (2009)
- A. Torrisi, P. Wachulak, . Wegrzynski, T. Fok, A. Bartnik, T. Parkman, vS. Vondrova, J. Turvvnova, B.J. Jankiewicz, B. Bartosewicz, H. Fiedorowicz. J. Microscopy, 00 (0), 1 (2016). DOI: 10.1111/jmi.12494A
- P.W. Wachulak, A. Torrisi, A. Bartnik, . Wegrzynski, T. Fok, H. Fiedorowicz. Appl. Phys. B, 123, 25 (2017). DOI: 10.1007/s00340-016-6595-5
- T. Ejima, F. Ishida, H. Murata, M. Toyoda, T. Harada, T. Tsuru, T. Hatano, M. Yanagihara, M. Yamamoto, H. Mizutani. Opt. Express, 18 (7), 7203 (2010). DOI: 10.1364/OE.18.007203
- P.A.C. Takman, H. Stollberg, G.A. Johansson, A. Holmberg, M. Lindblom, H.M. Hertz. J. Microscopy, 226, 175 (2007)
- C.A. Larabell, M.A. Le Gros. Molec. Biol. Cell, 15, 957 (2004)
- D. Weib, G. Schneider, B. Niemann, P. Guttmann, D. Rudolph, G. Schmah. Ultramicr., 84, 185 (2000)
- M. Bertilson, O. von Hofsten, U. Vogt, A. Holmberg, A.E. Christakou, H.M. Hertz. Opt. Lett., 36 (14), 2728 (2011). DOI: 10.1364/OL.36.002728
- E. Fogelqvist, M. Kordel, V. Carannante, B. Onfelt, H.M. Hertz. Sci. Rep., 7, 13433 (2017)
- H.M. Hertz, O. von Hofsten, M. Bertilson. J. Str. Biol., 177 (2), 267 (2012)
- P.W. Wachulak, A. Torrisi, A. Bartnik, L. Wegrzynski, T. Fok, H. Fiedorowicz. J. Phys.: Conf. Ser., 849, 012050 (2017). DOI: 10.1088/1742-6596/849/1/012050
- E. Hanssen, C. Knoechel, M. Dearnley. J. Struct. Biol., 177, 224 (2012)
- V. Loconte, J.-H. Chen, M. Cortese, A. Ekman, M.A. Le Gros, C. Larabell, R. Bartenschlager, V. Weinhardt. Cell Reports Methods, 1 (7), 100117 (2021). DOI: 10.1016/j.crmeth.2021.100117
- J.-H. Chen, B. Vanslembrouck, V. Loconte, A. Ekman, M. Cortese, R. Bartenschlager, G. McDermott, C.A. Larabell, M.A. Le Gros, V. Weinhardt. STAR Protocols, 3 (1), 101176 (2022). DOI: 10.1016/j.xpro.2022.101176
- B. Rosner, F. Koch, F. Doring, V.A. Guzenko, M. Meyer, J.L. Ornelas, A. Spath, R.H. Fink, S. Stanescu, S. Swaraj. Microsc. Microanalysis, 24, 270 (2018). DOI: 10.1017/S1431927618013697
- W. Chao, P. Fischer, T. Tyliszczak. Opt. Express, 20, 9777 (2012)
- V. De Andrade, V. Nikitin, M. Wojcik. Adv. Mater., 33, 2008653 (2021)
- I.V. Malyshev, N.I. Chkhalo. Ultramicroscopy, 202, 76 (2019)
- Электронный ресурс. Режим доступа: https://www.euvlitho.com/2018/P22.pdf
- N.I. Chkhalo, I.V. Malyshev, A.E. Pestov, V.N. Polkovnikov, N.N. Salashchenko, M.N. Toropov, A.A. Soloviev. Appl. Optics, 55 (3), 619 (2016). DOI: 10.1364/AO.55.000619
- Н.И. Чхало, И.В. Малышев, А.Е. Пестов, В.Н. Полковников, Н.Н. Салащенко, М.Н. Торопов. УФН, 190 (1), 74 (2020). DOI: 10.3367/UFNr.2019.05.038601
- N.I. Chkhalo, I.A. Kaskov, I.V. Malyshev. Prec. Eng., 48, 338 (2017)
- I.V. Malyshev, D.G. Reunov, N.I. Chkhalo. Opt. Express, 30 (26), 47567 (2022)
- А.Н. Нечай, А.А. Перекалов, Н.Н. Салащенко, Н.И. Чхало. Опт. и спектр., 129 (2), 146 (2021)
- А.В. Водопьянов, С.А. Гарахин, И.Г. Забродин, С.Ю. Зуев, А.Я. Лопатин, А.Н. Нечай, А.Е. Пестов, А.А. Перекалов, Р.С. Плешков, В.Н. Полковников, Н.Н. Салащенко, Р.М. Смертин, Б.А. Уласевич, Н.И. Чхало. Квантовая электроника, 51 (8), 700 (2021). [A.V. Vodop'yanov, S.A. Garakhin, I.G. Zabrodin, S.Yu. Zuev, A.Ya. Lopatin, A.N. Nechay, A.E. Pestov, A.A. Perekalov, R.S. Pleshkov, V.N. Polkovnikov, N.N. Salashchenko, R.M. Smertin, B.A. Ulasevich, N.I. Chkhalo. Quantum Electron., 51, 700 (2021). DOI: 10.1070/QEL17598]
- N.I. Chkhalo, E.B. Kluenkov, A.Ya. Lopati et al. Thin Solid Films, 631, 93 (2017)
- M. Toropov, N. Chkhalo, I. Malyshev, N. Salashchenko. Opt. Lett., 47 (14), 3459 (2022)
- A.A. Akhsakhalyan, N.I. Chkhalo, N. Kumar, I.V. Malyshev et al. Prec. Eng., 72, 330 (2021)
- Электронный ресурс. Режим доступа: https://www.optics-pro.com/botany/lieder-convallaria-maigloeckchen-rhizom-quer-konzentrische-leitbuendel/p,64540
- A.D. Pospelov, O.M. Kutova, Y.M. Efremov, A.A. Nekrasova, D.B. Trushina, S.D. Gefter, E.I. Cherkasova, L.B. Timofeeva, P.S. Timashev, A.V. Zvyagin, I.V. Balalaeva. Cells, 12, 2030 (2023). DOI: 10.3390/cells12162030
Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.
Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.