Вышедшие номера
Апробация технологии лазерного восстановления мягких тканей с помощью лазерной спекл-контрастной визуализации in vivo
Министерство науки и высшего образования Российской Федерации, Государственное задание, FSMR-2024-0003
Рябкин Д.И.1,2, Ставцев Д.Д.1,2, Сучкова В.В.1,2, Морозова Е.А.3, Пьявченко Г.А.4, Коновалов А.Н.2,5, Селищев С.В.1, Герасименко А.Ю.1,2
1Институт биомедицинских систем, Национальный исследовательский университет "Московский институт электронной техники", Москва, Зеленоград, Россия
2Институт бионических технологий и инжиниринга, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет), Москва, Россия
3Кафедра пропедевтики стоматологических заболеваний, Медицинский институт, Российский университет дружбы народов, Москва, Россия
4Кафедра анатомии и гистологии человека, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет), Москва, Россия
5Третье нейрохирургическое отделение, Национальный медицинский исследовательский центр нейрохирургии им. акад. Н.Н. Бурденко Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия
Поступила в редакцию: 18 декабря 2024 г.
В окончательной редакции: 18 декабря 2024 г.
Принята к печати: 18 декабря 2024 г.
Выставление онлайн: 24 апреля 2025 г.

Целью работы является апробация разработанной технологии лазерного восстановления мягких тканей на лабораторных кроликах in vivo. Технология лазерного восстановления включает в себя нанесение на зону рассечения лазерного биополимерного припоя на основе бычьего сывороточного альбумина, одностенных углеродных нанотрубок и хромофора - индоцианина зеленого и последующее облучение лазерным излучением с длиной волны 810 nm. Лазерная система оснащена температурной обратной связью, позволяющей осуществлять непрерывный мониторинг и контроль температуры в зоне формирования лазерного шва. Во время операции и перед днем выведения методом лазерной спекл-контрастной визуализации проводилось исследование восстановления микроциркуляции кровотока в области лазерного соединения биологических тканей. После проведения экспериментов на каждый день выведения проводились гистологические и иммуногистохимические исследования лазерных швов для оценки эффективности заживления тканей и степени рубцевания, а также токсикологические исследования лимфатических узлов, прилегающих к зоне лазерного восстановления. В результате исследований было установлено, что разработанная технология не нарушает кровоток и позволяет создавать швы без образования грубого рубца. Ключевые слова: лазерная хирургия, спекл-контрастная визуализация, биополимеры, одностенные углеродные нанотрубки.
  1. H.V. Vinters, K.A. Galil, M.J. Lundie. Neuroradiology, 27, 279 (1985). DOI: 10.1007/BF00339559
  2. P. Ferreira, H. Gil, P. Alves. An overview in surgical adhesives. In Recent Advances in Adhesions Research (Nova Science Publishers, Inc., Hauppauge, NY., 2013), p. 59-85
  3. R. Urie, T. Flake, K. Rege. Laser Tissue Welding. In Wound Healing and Surgical Repair Bioengineering In Wound Healing: A Systems Approach, 303-324 (2017). DOI: 10.1142/9789813144583_0011
  4. K.M. McNally, S.B. Sorg, A.J. Welch, J.M. Dawes, E.R. Owen. Phys. Med. Biol., 44 (4), 983 (1999). DOI: 10.1088/0031-9155/44/4/013
  5. L.W. Murray, L. Su, G.E. Kopchok, R.A. White. Lasers in Surgery and Medicine, 9 (5), 490 (1989). DOI: 10.1002/lsm.1900090512
  6. B.B. Scott, M.A. Randolph, F.P.S. Guastaldi, R.C. Wu, R.W. Redmond. Surg. Innov., 30 (2), 143 (2023). DOI: 10.1177/15533506221104382
  7. С. Li, K. Wang, Opt. Laser Technol., 138, 106862 (2021). DOI: 10.1016/j.optlastec.2020.106862
  8. J. Dong, H. Breitenborn, R. Piccoli, L.V. Besteiro, P. You, D. Caraffini, Z.M. Wang, A.O. Govorov. Biomed. Opt. Express, 11 (4), 2254 (2020). DOI: 10.1364/BOE.389561
  9. Y.A. Mistry, S.S. Natarajan, S.A. Ahuja. Ann. Maxillofac. Surg., 8 (1), 35 (2018). DOI: 10.4103/ams.ams_147_17
  10. J.W. Oliver, R.L. Vincelette, G.D. Noojin, C.D. Clark III, C.A. Harbert, K.J. Schuster, A.D. Shingledecker, S.S. Kumru, J. Maughan, N. Kitzis, G.D. Buffington, D.J. Stolarski, R.J. Thomas. J. Biomed. Opt., 18 (12), 125002 (2013). DOI: 10.1117/1.JBO.18.12.125002
  11. J.N. Bixler, B.H. Hokr, M.L. Denton, G.D. Noojin, A.D. Shingledecker, H.T. Beier, R.J. Thomas, B.A. Rockwell, V.V. Yakovlev. J. Biomed. Opt., 19 (7), 070501 (2014). DOI: 10.1117/1.JBO.19.7.070501
  12. P. Vescovi, E. Merigo, C. Fornaini, J.-P. Rocca, S. Nammour. Medicina Oral, Patol. Oral Cir. Bucal, 17 (4), e697 (2012). DOI: 10.1109/IWBP.2011.5954804
  13. B. Hiebl, L. Ascher, K. Luetzow, K. Kratz, C. Gruber, C. Mrowietz, Clin. Hemorheol. Microcirc., 69 (1-2), 317 (2018). DOI: 10.3233/CH-189108
  14. M.B. Reinhart, C.R. Huntington, L.J. Blair, B.T. Heniford, V.A. Augenstein, Surg. Innov., 23 (2), 166 (2015). DOI: 10.1177/1553350615604053
  15. A.Yu. Gerasimenko, E.A. Morozova, D.I. Ryabkin, A. Fayzullin, S.V. Tarasenko, V.V. Molodykh, E.S. Pyankov, M.S. Savelyev, E.A. Sorokina, A.Y. Rogalsky, A. Shekhter, D.V. Telyshev. Bioengineering, 9 (6), 238 (2022). DOI: 10.3390/bioengineering9060238
  16. А.Ю. Герасименко, Д.И. Рябкин. Конденсированные среды и межфазные границы, 21 (2), 191 (2019)
  17. A. Gerasimenko, N. Zhurbina, U. Kurilova, A. Polokhin, D. Ryabkin, M. Savelyev, V. Podgaetsky. SPIE, 10675, 111 (2018). DOI: 10.1117/12.2306792
  18. G. Piavchenko, I. Kozlov, V. Dremin, D. Stavtsev, E. Seryogina, K. Kandurova. J. Biophotonics, 14 (12), e202100216 (2021). DOI: 10.1002/jbio.202100216
  19. A.-A. Grosset, K. Loayza-Vega, E. Adam-Granger, M. Birlea, B. Gilks, B. Nguyen, G. Soucy, D. Tran-Thanh, R. Albadine, D. Trudel, Appl. Immunohistochem. Molecular Morphology, 27 (7), 558 (2019). DOI: 10.1097/PAI.0000000000000727

Подсчитывается количество просмотров абстрактов ("html" на диаграммах) и полных версий статей ("pdf"). Просмотры с одинаковых IP-адресов засчитываются, если происходят с интервалом не менее 2-х часов.

Дата начала обработки статистических данных - 27 января 2016 г.